РАЗДЕЛ 2
ОБЪЕКТЫ, МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Общая характеристика обследованных пациентов
Для проведения исследования было выбрано 103 человека с дефектами зубных рядов
в возрасте от 20 до 60 лет. Кроме того, обследовано 18 практически здоровых
лиц, составивших контрольную группу.
В соответствии с задачами исследования пациенты были разделены на четыре группы
(табл. 2.1). В качестве контроля обследовано 18 человек, не страдающих
дентальной патологией.
Таблица 2.1
Характеристика исследуемых групп
Номер группы
Разделение по полу
Вид лечения
Контроль
18
мужчины
10
без дентальной патологии
женщины
25
мужчины
12
эндооссальные винтовые титановые имплантаты без ГАП
женщины
13
II
25
мужчины
11
эндооссальные винтовые титановые имплантаты без ГАП + «Коллапан-Л» + «Эрбисол»
женщины
14
III
24
мужчины
12
эндооссальные винтовые титановые имплантаты c ГАП
женщины
12
IV
29
мужчины
15
эндооссальные винтовые титановые имплантаты c ГАП
+ «Коллапан-Л» + «Эрбисол»
женщины
14
Ортопедическое лечение проводили по двухэтапной методике имплантации винтовыми
титановыми имплантатами Impladent фирмы «Lasak», «Bredent», «Calcitec» и др. с
дальнейшей фиксацией несъемных конструкций.
Эрбисол вводили ежедневно внутримышечно в ягодичную мышцу по 1 мл однократно.
Продолжительность терапевтического курса — 10 дней [68].
2.2. Клинические методы исследования
Проба Шиллера - Писарева. Ватным тампоном осушают обследуемый участок десны,
изолируют от слюны и смазывают видоизмененным раствором Люголя (1,0 I2 + 2,0 КI
+ 40,0 мл дистиллированной воды). Принцип пробы заключается в окрашивании
раствором Люголя гликогена десны (реакция с йодом). При воспалении происходит
накопление гликогена в десне за счет кератинизации эпителия [37].
При отсутствии воспалительных явлений слизистая оболочка десны окрашивается в
соломенно-желтый цвет. Под влиянием хронического воспаления в десне резко
возрастает количество гликогена, окрашиваемого йодом в коричневый цвет, который
изменяется от светло-коричневого до темно-бурого, что обусловлено степенью
воспалительного процесса. Интенсивность окрашивания оценивают в баллах.
Различают отрицательную пробу (соломенно-желтое окрашивание) – 1 балл,
слабоположительную (светло-коричневое) – 2 балла, положительную (темно-бурое) –
3 балла.
Определение скорости саливации. Для оценки функционального состояния тканей
челюстно-лицевой области избраны показатели скорости саливации, поскольку
слюнные железы - прекрасный тест-объект для выявления общей патологии [51, 52,
56].
Сбор слюны осуществляли утром спустя 2-3 часа после приема пищи, используя
мерные центрифужные пробирки, путем сплевывания в течение 5 минут
(нестимулированная слюна). После центрифугирования измеряли объем слюны.
Скорость саливации выражали в мл/мин.
Рентгенологическое исследование. Рентгенодиагностика проводилась путем
проведения прицельных внутриротовых рентгенологических снимков и
ортопантомограмм челюстей. Контактные рентгенограммы осуществляли на дентальном
аппарате “Siemens”, панорамные – на рентгенаппарате «Granex ds». Замеры
резорбции костной ткани в области шейки имплантатов проводились с помощью
курсора програмного обеспечения Pro Max на компьютерных панорамных
рентгенограммах, полученных на панорамном рентгенаппарате Pro Max X-ray фирмы
Planmeka [58].
2.3. Биофизические методы исследования
Мониторинг биопотенциалов ротовой полости широко применяется в стоматологии
[23, 57, 69, 76]. Для изучения биопотенциалов ротовой полости мы использовали
биопотенциалометр БПМ-0З производства НПО «Сатурн» Россия.
Порядок работы: устанавливаем источник питания 8 элементов типа 343 (1,5 в),
соблюдая полярность. Подключаем электроды к гнездам ЭП прибора. На концы
электродов надеваем электролитические ключи из комплекта и опускаем последние в
стакан с физиологическим раствором. Включаем прибор кнопкой «Вкл», через 5 мин.
ручкой «баланс» устанавливаем показания 00,0 - 00,1.
Измерения проводим при открытом рте, устанавливая концы электролитических
ключей на требуемые участки зоны: имплантат-слизистая, покрывающая конструкция
- металл – слизистая. Результат фиксировался по данным табло в милливольтах.
Каждое измерение повторялось три раза, затем рассчитывался средний показатель
биопотенциала.
2.4. Цитохимические методы исследования
Несомненный интерес представляло изучение активности дегидрогеназ - ферментов
цикла Кребса и гликолиза: сукцинатдегидрогеназы (СДГ) и лактатдегедрогеназы
(ЛДГ), значения которых рассматривались нами, как неспецифический показатель
повреждения клеток. Общеизвестно, что сукцинатдегидрогеназа и
лактатдегидрогеназа относятся к числу важнейших клеточных ферментов.
Сукцинатдегидрогеназа прочно связана с внутренней митохондриальной мембраной
клеток и катализирует реакцию, при которой янтарная кислота (сукцинат)
дегидратируется в фумаровую кислоту (фумарат).
Лактатдегидрогеназа находится в цитозоле клетки и в анаэробных условиях
катализирует обратимую реакцию восстановления пировиноградной кислоты (пируват)
в молочную (лактат), являющуюся конечным продуктом гликолиза.
Поскольку цитохимические методы исследования указанных ферментов в клетках
крови подробно описаны в литературе, то здесь указаны принципы их определения
[12, 13, 97].
Дегидрогеназы - ферменты, которые отщепляют водород от соответствующего
субстрата и переносят его на акцептор. Этот механизм действия используется в
цитохимических методах, при которых в систему вводится индикатор, принимающий
на себя водород. Индикатор при этом должен иметь окраску и выпадать в осадок.
Для этих целей наиб
- Київ+380960830922